组织培养一般分为五个步骤：

培养基的成份随植物的种类、外植体的类型、培养阶段的不同而不同。一般来说，培养基应含有大量元素、微量元素、铁盐、维生素、激素、糖和琼脂等物质，有时还在培养基中添加有机附加物，如活性炭、椰子汁等。培养基的配制按如下步骤进行：

（1）根据培养材料确定培养基。一般可先试用MS培养基，若不适，再改用其它培养基。

附：MS培养基——A组：（大量元素）（单位：mg·L^-1，下同）

NH₄NO₃ 1650 ；KNO₃ 900 ；CaCl₂ 440 ；MgSO₄·7H₂O 370；KH₂PO₄ 170

KI 0.83 ；H₃BO₃ 6.2 ；MnSO₄·H₂O 22.3 ； ZnSO₄·7H₂O 10.6

Na₂MoO₄·2H₂O 0.25 ；CuSO₄·5H₂O 0.025  ； CoCl₂·6H₂O 0.025

EDTA 37.3  ； FeSO₄·7H₂O 27.8

甘氨酸（C₂H₅NO₂） 2.0 ； 盐酸硫胺素（VB₆） 0.1 ； 烟酸 0.5

吲哚乙酸（VB₁） 1-30 ； 盐酸吡哆醇 0.5 ； 6-苄基氨基腺嘌呤（6-BA） 0.04-10 ； IAA（吲哚乙酸） 0.01-3

其他溶液的配制：1mol/L的NaOH溶液，0.1mg/mL的6-BA溶液，0.1mg/mL的IAA溶液，0.1mg/mL的2,4-D溶液，0.1mg/mL的KT溶液，0.1mg/Ml的ZT溶液。

（2）按照确定的培养基配方配制培养基，一般包括溶化琼脂、加入蔗糖和母液、调整酸碱度、定容、分装等步骤。

（3）对分装好的培养基进行高压灭菌，将灭菌好的培养基放入接种室中。

（1）外植体的切取及消毒。用于快速繁殖的外植体可以是种子、茎尖、叶片、花序等。外植体必须先进行消毒，其消毒方法是：从植株上切取所需的部分，用水冲洗干净，而后移入超净工作台中用消毒剂（次氯酸钠、氯化汞、酒精等）进行消毒，但不管使用什么消毒剂，消毒后的外植体应该是无菌的，而其本身没有被消毒剂杀死。

（2）将消毒后的外植体接种到培养基中，接种时要求迅速准确，防止交叉污染。

消毒后的外植体在培养基上培养一段时间后可诱导出从芽、胚状体、原球茎、根状茎，这些培养材料称为中间繁殖体。对中间繁殖体进行切割、继代培养就可以进行中间繁殖体的增殖。中间繁殖体的增殖速度随花卉的种类、培养基、培养条件的不同而异，因而对具体花卉需进行试验，找到合适的繁殖条件，以达到“快繁”的目的。

当中间繁殖体增殖到一定数量后快速繁殖进入生芽、壮苗和生根阶段。如果是通过从芽繁殖，则不需经过生芽直接进行壮苗、生根，如果是通过其它途径则需先将中间繁殖体转移到生芽培养基上，然后再转移到壮苗生根培养基上。在壮苗生根培养基上，大多数花卉要分离成单苗。

对已经生根的试管苗及时移栽是花卉快繁的最后工作，而且也是十分关键的工作。由于试管苗是在无菌、有营养供给、适合光照、温度和100%相对湿度环境中生长的，因而刚出瓶的试管苗对外面环境不太适应，稍一不慎便会造成大量死苗。所以对刚出瓶的试管苗要给予特别的照顾，适当的温度、弱光照、高的空气湿度、适宜的基质及对病虫害的有效控制是提高成活率的关键。