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环境中微生物的观察及从土壤中分离纯化微生物



录入时间:2011-7-8 14:33:44 来源:互联网

 
1.实验目的和要求 
 
(1)通过对周围环境中微生物的观察,理解无菌操作原理,了解微生物的普遍存在性。
(2)通过从土壤中分离纯化微生物,掌握无菌操作技术。
 
2.实验材料和仪器
 
2.1配制肉汤蛋白胨固体培养基平板(每组15个)
 
(1)牛肉膏5g;
(2)蛋白胨10g;
(3)NaCl 5g;
(4)琼脂20g;
(5)自来水1000mL pH 7.5,0.1MPa,121℃来菌20min。
 
2.2无菌生理盐水
 
(1)250mL三角瓶中加入99mL 0.9% NaCl (加20个左右的玻璃珠);
(2)250mL三角瓶中加入50mL 0.9% NaCl (作10倍稀释用)。
 
2.3仪器及器皿
 
(1)带螺帽试管5支;
(2)牙签2支;
(3)5mL及1mL吸头2支;
(4)涂布棒2支;
(5)5mL及1mL取液器各一支;
(6)30℃和37℃培养箱;
(7)接种环、酒精灯和火柴;
(8)摇床。
 
(1)-(4)要求事先灭菌。
 
3.实验方法和步骤
3.1从土壤中分离和纯化微生物
 
(1)采土样
     选择较肥沃的土壤,铲去表土层,挖5-20cm深度的或特殊要求的地方土壤数10g,装入灭过菌的牛皮纸袋内,封好袋口,做好编号记录,携回实验室供分离用。
 
(2)制备土壤稀释液
     称取土样1.0g放入盛99mL无菌水并带有玻璃珠的三角瓶中,置摇床振荡5min使土样均匀分散在稀释液中成为土壤悬液(10-2)。用1mL的无菌吸头从中吸取0.5mL土壤悬液注入盛有4.5mL无菌水的试管中,吹吸3次,振荡混匀(10-3)。然后再用同一支1mL吸头,从此管中吸取0.5mL注入另一盛有4.5mL无菌水的试管中(10-4),依此类推制成10-5,10-6,10-7各种稀释度的土壤溶液。
 
3.2涂布
   用一支1mL无菌吸头分别从稀释度10-7、10-6和10-5的土壤稀释液中各吸取0.1mL对号放入已写好稀释度的肉汤蛋白胨培养基平板上,用无菌玻璃涂棒在培养基表面轻轻地涂布均匀。涂布时从低浓度到高浓度分别在培养基表面轻轻地涂布,可转动皿底一定角度,继续涂布,直至均匀。每个浓度做3个平板。
 
3.3培养
   将平板倒置于37℃温箱中培养48h。统计每个平板长出的平均菌落数。根据下面菌落计数方法,算出每克土壤中的细菌含量。
 
3.4菌落计数方法
   先计算相同稀释度的平均菌落数。若其中一个培养皿有较大片菌苔生长时,则不应使用,而应以无片状菌苔生长的平皿作为该稀释度的平均菌落数。若片状菌苔的大小不到培养皿的一半,而其余的一半菌落分布又很均匀时,可将此一半的菌落数乘2以代表全部平皿的菌落数,然后再计算该稀释度的平均菌落数。
   首先选择平均菌落数为30~300的平板,当只有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时,则以该平均菌落数乘以其稀释倍数即为该样品中的微生物总数。
   若有两个稀释度的平均菌落数为30~300,则按两者菌落总数之比值来决定。若其比值小于2,应采取两者的平均数:
   若大于2,则取其中较少的菌落总数。
   若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数。
   若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数。
   若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300之间,则以最接近30或300的平均菌落数乘以稀释倍数。
 

 

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